The influence of cytokinins on in vitro multiplication  of Aeschynanthus hybridus ‘Carina’ shoots

DANUTA KOZAK; MAGDALENA STELMASZCZUK

Tom 20 Nr 1 (2010)

Articles

Wpływ cytokinin na namnażanie in vitro pędów Aeschynanthus hybridus ‘Carina’

DANUTA KOZAK⁺⁻
MAGDALENA STELMASZCZUK⁺⁻

pdf (English)

Przesłane: lipca 26, 2019
Opublikowane: 2010-12-29

Abstrakt

Wierzchołki pędów Aeschynanthus hybridus ‘Carina’ pochodzące ze sterylnych kultur in vitro rosły 5 tygodni na pożywce MS uzupełnionej cytokininami BA (4.4, 8.9, 22.2 µM), kinetin (4.7, 9.3, 23.3 µM), 2iP (4.9, 9.9, 24.6 µM). Eksplantaty wyłożone na pożywkę bez cytokininy stanowiły kontrolę. Stwierdzono istotny wpływ rodzaju i stężenia cytokininy na namnażanie pędów. Na pożywce z dodatkiem BA 22.2 µM uzyskano najwyższy współczynnik namnażania. W obecności 2iP 24.6 µM pędy kątowe regenerowały sporadycznie, natomiast nie uzyskano nowych pędów na pożywce z dodatkiem kinetyny. Najlepsze ukorzenianie pędów obserwowano w kontroli oraz na pożywkach z dodatkiem 2iP.

Bibliografia

Afkhami-Sarvestani R., Serek M., Wilkelmann T., 2006. Plant regeneration from different explant types of Streptocarpus spec. in vitro. Acta Hort. 725, 397–400.
Chee-Kok Ch., 1980. Growth behavior of green and albino plants of Episcia cupreata ‘Pink Brocade’ in vitro. In Vitro 16,10, 847–850.
Cui J., Chen J., Henny R.J., 2009. Regeneration of Aeschynanthus radicans via direct somatic embryogenesis and analysis of regenerants with flow cytomery. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 45, 1, 34–43.
Daud N., Taha R.M., Hasbullah N.H., 2008. Studies on plant regeneration and somaclonal variation in Saintpaulia ionantha Wendl. (African violet). Pak. J. Biolog. Sci. 11, 9, 1240–1245.
Dąbski M., Kozak D., 1996. Ocena zdolności regeneracyjnych kilku genotypów Aeschynanthus in vitro. Zesz. Nauk. ATR Bydgoszcz, 197, Rolnictwo, 39, 109–114.
Dąbski M., Kozak D., 1998. Wpływ cytokinin na wytwarzanie i wzrost pędów bocznych Aeschynanthus speciosus in vitro. Fol. Univ. Agric. Stetin. 187, Agricultura 70, 19–23.
Godo T., Lu Y., Mii M., 2010. Micropropagation of Lysionotus pauciflorus Maxim. (Gesneriaceae). Methods Mol. Biol. 587, 127–139.
Khan S., Naseeb S., Ali K., 2007. Callus induction, plant regeneration and acclimatization of African violet (Saintpaulia ionantha) using leaves as explants. Pak. J. Bot. 39, 4, 1263–1268.
Kozak D., Hetman J., Witek M., 2006. Wpływ cytokinin na namnażanie Kohleria amabilis (Planch. et Linden) Fritsch in vitro. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 510, 295–230.
Li Y., Wang Q., Li Y., wang H., 2001. Application of orthogonal design in tissue culture of Nematanthus glabra. Acta Hort. Sinica 28, 6, 570–571.
Li J., Xing Q., Chen W., Guo D., Shi L., 2009. Tissue culture and rapid propagation of Chirita medica D.Fang ex W.T. Wang. Propagat. Ornamen. Plants 9, 2, 97–101.
Lo K.H., 1997. Factors affecting shoot organogenesis in leaf disc culture of African violet. Sci. Hort. 72, 49–57.
Lu Y., Godo T., Chin D.P., Mii M., Guan K., 2006. Establishment of callus culture with plant regeneration ability from leaf segments of Lysionotus pauciflorus Maxim. Propagat. Ornament. Plants 6, 4, 180–186.
Murashige T., Skoog F., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15, 473–479.
Nakano M., Takagi H., Sugawara S., Saito T., Watanabe Y., Yuanxue L., Kaiyun G., Godo T., 2009. Micropropagation of Chirita flavimaculata W.T. Wang, C.Eburnea Hance, and C.Speciosa Kurz. Propagat. Ornament. Plants 9, 4, 216–222.
Palazetti de Almeida V., Kirszenzaft Shepherd S.L., 1999. Sinningia allagophylla (Gesneriaceae) in vitro cultivation of a native plant of the Brazilian cerrado. Revta Brasil. Bot. 22, 3, 381–384.
Tang Z., Lin H., Shi L., Chen W., 2007a. Rapid in vitro multiplication of Chirita longgangensis W.T. Wang: an endemic and endangered Gesneriaceae species. HortScience 42, 3, 638–641.
Tang Z-H., Lei S., Chen W-L., Lin H-H., 2007b. In vitro propagation of Chirita heterotricha Merr. Propagat. Ornament. Plants 7, 1, 43–48.
Xu Q-L., Hu Z., Li C-Y., Wang X-Y., Wang C-Y., 2009. Tissue culture of Sinningia speciosa and analysis of the in vitro-generated tricussate whorled phyllotaxis (twp) variant. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 45, 5, 583–590.

Downloads

Download data is not yet available.

Słowa kluczowe

Aeschynanthus hybridus
cytokininy
mikrorozmnażanie

Prawa autorskie

Inne teksty tego samego autora

EWA KRÓL, DANUTA KOZAK, MARZENA PARZYMIES, BARBARA MARCINEK, ALICJA ŚWISTOWSKA, Mikroorganizmy zasiedlające kultury in vitro gloriozy (Gloriosa rothschildiana O’Brien) i czosnków ozdobnych (Allium L.) , Annales Horticulturae: Tom 27 Nr 3 (2017)
DANUTA KOZAK, MAGDALENA STELMASZCZUK, Wpływ benzyloadeniny na regenerację pędów Zantedeschia aethiopica ‘Green Goddess’ in vitro , Annales Horticulturae: Tom 19 Nr 1 (2009)

Podobne artykuły

PAWEŁ SZOT, MARZENA PARZYMIES, MONIKA PONIEWOZIK, Rozmnażanie storczyków w kulturach tkankowych , Annales Horticulturae: Tom 25 Nr 1 (2015)
EWA KRÓL, DANUTA KOZAK, MARZENA PARZYMIES, BARBARA MARCINEK, ALICJA ŚWISTOWSKA, Mikroorganizmy zasiedlające kultury in vitro gloriozy (Gloriosa rothschildiana O’Brien) i czosnków ozdobnych (Allium L.) , Annales Horticulturae: Tom 27 Nr 3 (2017)
JACEK GAWROŃSKI, JADWIGA ŻEBROWSKA, ELŻBIETA KACZMARSKA, WOJCIECH MARECKI, MAGDALENA DYDUCH-SIEMIŃSKA, JERZY HORTYŃSKI, PIOTR SZYPIŁO, BOŻENA SZAFRAŃSKA, KATARZYNA CZOPSKA, Analiza wzrostu i rozwoju siewek jagody kamczackiej (Lonicera caerulea L. var. kamtschatica Sevast.) w kulturze in vitro , Annales Horticulturae: Tom 23 Nr 4 (2013)

Możesz również Rozpocznij zaawansowane wyszukiwanie podobieństw dla tego artykułu.

[1] Afkhami-Sarvestani R., Serek M., Wilkelmann T., 2006. Plant regeneration from different explant types of Streptocarpus spec. in vitro. Acta Hort. 725, 397–400.

[2] Chee-Kok Ch., 1980. Growth behavior of green and albino plants of Episcia cupreata ‘Pink Brocade’ in vitro. In Vitro 16,10, 847–850.

[3] Cui J., Chen J., Henny R.J., 2009. Regeneration of Aeschynanthus radicans via direct somatic embryogenesis and analysis of regenerants with flow cytomery. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 45, 1, 34–43.

[4] Daud N., Taha R.M., Hasbullah N.H., 2008. Studies on plant regeneration and somaclonal variation in Saintpaulia ionantha Wendl. (African violet). Pak. J. Biolog. Sci. 11, 9, 1240–1245.

[5] Dąbski M., Kozak D., 1996. Ocena zdolności regeneracyjnych kilku genotypów Aeschynanthus in vitro. Zesz. Nauk. ATR Bydgoszcz, 197, Rolnictwo, 39, 109–114.

[6] Dąbski M., Kozak D., 1998. Wpływ cytokinin na wytwarzanie i wzrost pędów bocznych Aeschynanthus speciosus in vitro. Fol. Univ. Agric. Stetin. 187, Agricultura 70, 19–23.

[7] Godo T., Lu Y., Mii M., 2010. Micropropagation of Lysionotus pauciflorus Maxim. (Gesneriaceae). Methods Mol. Biol. 587, 127–139.

[8] Khan S., Naseeb S., Ali K., 2007. Callus induction, plant regeneration and acclimatization of African violet (Saintpaulia ionantha) using leaves as explants. Pak. J. Bot. 39, 4, 1263–1268.

[9] Kozak D., Hetman J., Witek M., 2006. Wpływ cytokinin na namnażanie Kohleria amabilis (Planch. et Linden) Fritsch in vitro. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 510, 295–230.

[10] Li Y., Wang Q., Li Y., wang H., 2001. Application of orthogonal design in tissue culture of Nematanthus glabra. Acta Hort. Sinica 28, 6, 570–571.

[11] Li J., Xing Q., Chen W., Guo D., Shi L., 2009. Tissue culture and rapid propagation of Chirita medica D.Fang ex W.T. Wang. Propagat. Ornamen. Plants 9, 2, 97–101.

[12] Lo K.H., 1997. Factors affecting shoot organogenesis in leaf disc culture of African violet. Sci. Hort. 72, 49–57.

[13] Lu Y., Godo T., Chin D.P., Mii M., Guan K., 2006. Establishment of callus culture with plant regeneration ability from leaf segments of Lysionotus pauciflorus Maxim. Propagat. Ornament. Plants 6, 4, 180–186.

[14] Murashige T., Skoog F., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15, 473–479.

[15] Nakano M., Takagi H., Sugawara S., Saito T., Watanabe Y., Yuanxue L., Kaiyun G., Godo T., 2009. Micropropagation of Chirita flavimaculata W.T. Wang, C.Eburnea Hance, and C.Speciosa Kurz. Propagat. Ornament. Plants 9, 4, 216–222.

[16] Palazetti de Almeida V., Kirszenzaft Shepherd S.L., 1999. Sinningia allagophylla (Gesneriaceae) in vitro cultivation of a native plant of the Brazilian cerrado. Revta Brasil. Bot. 22, 3, 381–384.

[17] Tang Z., Lin H., Shi L., Chen W., 2007a. Rapid in vitro multiplication of Chirita longgangensis W.T. Wang: an endemic and endangered Gesneriaceae species. HortScience 42, 3, 638–641.

[18] Tang Z-H., Lei S., Chen W-L., Lin H-H., 2007b. In vitro propagation of Chirita heterotricha Merr. Propagat. Ornament. Plants 7, 1, 43–48.

[19] Xu Q-L., Hu Z., Li C-Y., Wang X-Y., Wang C-Y., 2009. Tissue culture of Sinningia speciosa and analysis of the in vitro-generated tricussate whorled phyllotaxis (twp) variant. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 45, 5, 583–590.