Skip to main navigation menu Skip to main content Skip to site footer
Baner text

Vol. 31 No. 4 (2022)

Articles

Laboratory evaluation of the effect of active fungicide ingredients on the growth of some phytopathogenic fungi

DOI: https://doi.org/10.24326/ah.2022.4.1
Submitted: August 24, 2022
Published: 2023-01-24

Abstract

The aim of this study was to evaluate laboratory effectiveness of the fungicidal effect of azoxystrobin (Amistar 250 SC) and difenoconazole (Score 250 EC) on selected phytopathogenic fungi (Alternatia alternata, Botritis cinerea, Fusarium avenaceum). The poison plate method was used in the study. The effect of azoxystrobin and difenoconazole on the growth of fungi depended on the species of fungus and the dose of toxic ingredient in the medium. The tested active ingredients did not show a fungicidal effect, but a fungistatic effect, most effective at higher concentrations, ie 0.01% and 0.1%. Difenoconazole was more effective against fungi than azoxystrobin. Both active ingredients inhibited the growth of A. alternata and B. cinerea from 3.85% to 88.07%, depending on the concentration of active ingredient and duration of action. Azoxystrobin at all tested concentrations did not inhibit F. avenaceum mycelium growth, while difenoconazole in the tested concentrations showed a weak fungistatic activity against F. avenaceum. The highest degree of growth inhibition of F. avenaceum noted for 0.1% difenoconazole concentration was 39.75%.

References

  1. Baggio J.S., Peres N.A., Amorim L., 2018. Sensitivity of Botrytis cinerea isolates from conventional and organic strawberry fields in Brazil to azoxystrobin, iprodione, pyrimethanil, and thiophanate-methyl. Plant Dis. 102(9), 1803–1810. DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-08-17-1221-RE
  2. Borecki Z., 1984. Fungicydy stosowane w ochronie roślin. PWN, Warszawa.
  3. Danielewicz B., Gwiazdowski R., Bednarek-Bartsch A., 2013. Influence of some selected fungicides on Fusarium genus cultures growth limitation. Prog. Plant Prot. 53(4), 759–761. DOI: https://doi.org/10.14199/ppp-2013-020
  4. Deising H.B., Reimann S., Pascholati S.F., 2008. Mechanisms and significance of fungicide resistance. Braz. J. Microbiol. 39(2), 286–295. https://doi.org/10.1590/S1517-838220080002000017 DOI: https://doi.org/10.1590/S1517-83822008000200017
  5. Dz.U. 2013 poz. 505. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 kwietnia 2013 r. w sprawie wymagań integrowanej ochrony roślin.
  6. Dz.U. L 309 z 21.10.2009. Dyrektywa Parlamentu Europejskiego i Rady 2009/128/WE z dnia 21.10.2009 ustanawiająca ramy wspólnotowego działania na rzecz zrównoważonego stosowania pestycydów.
  7. He M.H., Wang Y.P., Wu E.J, Shen L.L., Yang L.N., Wang T., Shang L.P., Zhu W., Zhan J., 2019. Constraining evolution of Alternaria alternata resistance to a demethylation inhibitor (DMI) fungicide difenoconazole. Front. Microbiol. 10, 1609. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01609 DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01609
  8. Hua L., Yong C., Zhanquan Z., Boqiang L., Guozheng Q., Shiping T., 2018. Pathogenic mechanisms and control strategies of Botrytis cinerea causing post-harvest decay in fruits and vegetables. Food Qual. Saf. 2(3), 111–119. https://doi.org/10.1093/fqsafe/fyy016 DOI: https://doi.org/10.1093/fqsafe/fyy016
  9. Jankowska M., Łozowicka B., 2021. Naturalne i syntetyczne substancje toksyczne występujące w roślinach rolniczych i ich produktach. Prog. Plant Prot. 61(1), 24–30. https://doi.org/10.14199/ppp-2021-003 DOI: https://doi.org/10.14199/ppp-2021-003
  10. Kempka J., 2014. Biologiczna ochrona roślin przed chorobami jako element integrowanej ochrony roślin. Centrum Doradztwa Rolniczego w Brwinowie, Kraków.
  11. Komunikat MRiRW, 2022. Nowe terminy na sprzedaż i stosownie środków ochrony roślin. https://www.gov.pl/web/rolnictwo/komunikat---nowe-terminy-na-sprzedaz-i-stosowanie-srodkow [dostęp: 22.06.2022].
  12. Kopacki M., Stępniak P.M., Jamiołkowska A., Skwaryło-Bednarz B., Krzepiłko A., 2019. Integrowana ochrona roślin jako element dobrej praktyki rolniczej. Aura 2, 12–14. http://dx.doi.org/10.15199/2.2019.2.3
  13. Kowalik R., Krechniak E., 1961. Szczegółowa metodyka biologicznych laboratoryjnych badań środków grzybobójczych. W: W. Węgorek (red.), Materiały do metodyki biologicznej oceny środków ochrony roślin. Wyd. Instytut Ochrony Roślin, Poznań, 63–66.
  14. Maia J.N., Beger G., Pereira W.V., De Mio L.L.M., Duarte H.D.S.S., 2021. Gray mold in strawberries in the Paraná state of Brazil is caused by Botrytis cinerea and its isolates exhibit multiple-fungicide resistance. Crop Prot. 140, 105415. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2020.105415 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2020.105415
  15. Montanarella L., Panagos P., 2021. The relevance of sustainable soil management within the European Green Deal. Land Use Policy 100, 104950. https://doi.org/10.1016/j.landusepol.2020.104950 DOI: https://doi.org/10.1016/j.landusepol.2020.104950
  16. Nowaczyk K., Obrępalska-Stęplowska A., 2006. Wybrane mechanizmy nabywania odporności organizmów na środki ochrony roślin. Postępy Biol. Komórki 33(1), 137–158.
  17. Pieczul K., 2015. Przyczyny odporności na fungicydy grzybów patogenicznych dla roślin. Zag. Doradz. Rol. 1, 83–93.
  18. Pralińska M., Jaśkiewicz J., Rackiewicz I., 2020. Wyzwania dla rolnictwa związane ze strategią Europejski Zielony Ład w okresie pandemii. Zesz. Nauk. Szk. Gł. Gospod. Wiej. Warsz., Probl. Rol. Światowego 20(2), 22–36. https://doi.org/10.22630/PRS.2020.20.2.10 DOI: https://doi.org/10.22630/PRS.2020.20.2.10
  19. Pruszyński S., 2016. Metoda biologiczna. W: S. Pruszyński. (red.), Metody ochrony w integrowanej ochronie roślin, Wyd. Centrum Doradztwa Rolniczego w Brwinowie, Poznań, 21–26.
  20. Rataj-Guranowska M., 2012. Botrytis cinerea Pers. W: M. Rataj-Guranowska, A. Pukacka (red.), Kompendium symptomów chorób roślin i morfologii ich sprawców. Bogucki Wydawnictwo Naukowe, Poznań, 38–41.
  21. Reuveni M., Sheglov D., 2002. Effects of azoxystrobin, difenoconazole, polyoxin B (polar) and trifloxystrobin on germination and growth of Alternaria alternata and decay in red delicious apple fruit. Crop Prot. 21(10), 951–955. DOI: https://doi.org/10.1016/S0261-2194(02)00073-X
  22. Shen C., Pan X., Wu X., Xu J., Dong F., Zheng Y., 2022. Ecological risk assessment for difenoconazole in aquatic ecosystems using a web-based interspecies correlation estimation (ICE)-species sensitivity distribution (SSD) model. Chemosfere 289, 133236. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2021.133236 DOI: https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2021.133236
  23. Sobczak J., Matyjaszczyk E., 2016. Porównanie kosztów chemicznej ochrony roślin z udziałem środków zawierających stare i nowe substancje aktywne. Rocz. Nauk. Stow. Ekon. Rol. Agrobiz. 18(2), 245–248.
  24. Stachowiak B., Czarnecki Z., Trojanowska K., Gulewicz K., 2006. Komposty i możliwość ich wykorzystania w biologicznej ochronie roślin. J. Res. Appl. Agric. Eng. 51(2), 171–177.
  25. Stępniewska-Jarosz S., Kierzek R., 2018. Fungi colonizing linseed plants (Linum usitatissimum L. var. brevimulticaulis Vav.) and efficacy of some fungicides against this plant diseases. Prog. Plant Prot. 58(4), 314–320. DOI: https://doi.org/10.14199/ppp-2018-044
  26. Stępniewska-Jarosz S., Kierzek R., Wojczyńska J., Sadowska K., Tyrakowska M., Łukaszewska-Skrzypniak N., Rataj-Guranowska M., 2017. Grzyby zasiedlające rośliny facelii błękitnej (Phacelia tanacetifolia Benth.) po zabiegach fungicydowych. Prog. Plant Prot. 57(4), 239–244. https://doi.org/10.14199/ppp-2017-036 DOI: https://doi.org/10.14199/ppp-2017-036
  27. Stępniewska-Jarosz S., Rataj-Guranowska M., 2012. Alternaria alternata (Fr.) Keiss. W: M. Rataj-Guranowska, A. Pukacka (red.), Kompendium symptomów chorób roślin i morfologii ich sprawców. Bogucki Wydawnictwo Naukowe, Poznań, 7–11.
  28. Wachowska U., Goriewa K., Duba A., 2017. Charakterystyka grup fungicydów i induktorów odporności stosowanych w ograniczaniu występowania patogenów zbóż. Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych, 589. DOI: https://doi.org/10.22630/ZPPNR.2017.589.25
  29. Wang H., Huang Y., Wang J., Chen X., Wei K., Wang M., Shang S., 2016. Activities of azoxystrobin and difenoconazole against Alternaria alternata and their control efficacy. Crop Prot. 90, 54–58. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2016.08.022
  30. Wolny-Koładka K., 2014. Grzyby z rodzaju Fusarium - występowanie, charakterystyka i znaczenie w środowisku. Kosmos 63(4), 623–633.
  31. Wrzaszcz W., Prandecki K., 2020. Rolnictwo a Europejski Zielony Ład. Zag. Ekon. Rol. 365(4), 156–179. DOI: https://doi.org/10.30858/zer/131841
  32. Yang L.N., He M.H., Ouyang H.B., Zhu W., Pan Z.C., Sui Q.J., Shang L.P., Zhan J., 2019. Cross-resistance of the pathogenic fungus Alternaria alternata to fungicides with different modes of action. BMC Microbiology 19, 205. https://doi.org/10.1186/s12866-019-1574-8 DOI: https://doi.org/10.1186/s12866-019-1574-8
  33. Zamojska J., Malinowski H., 2012. Integrated plant protection and pest resistance to pesticide in Poland. Prog. Plant Prot. 52(4), 1–5.

Downloads

Download data is not yet available.

Similar Articles

1 2 > >> 

You may also start an advanced similarity search for this article.