Mikroorganizmy zasiedlające kultury in vitro gloriozy (Gloriosa rothschildiana O’Brien) i czosnków ozdobnych (Allium L.)
EWA KRÓL
Katedra Ochrony Roślin, Wydział Ogrodnictwa i Architektury Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. S. Leszczyńskiego 7, 20-069 LublinDANUTA KOZAK
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 LublinMARZENA PARZYMIES
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 LublinBARBARA MARCINEK
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 LublinALICJA ŚWISTOWSKA
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 LublinAbstrakt
Podczas mikrorozmnażania roślin ozdobnych obserwowano zanieczyszczenia pożywki oraz mikrobulw gloriozy i mikropędów czosnków. W celu poznania mikroorganizmów zagrażających kulturom in vitro przeprowadzono identyfikację grzybów i bakterii na podstawie cech morfologicznych oraz wybranych testów fizjologicznych i biochemicznych. W przypadku bakterii przeprowadzono także testy patogeniczności, aby w pełni ocenić ich szkodliwość. Okazało się, że najczęściej izolowano niepatogeniczne bakterie, wśród których dominowały Gram-ujemne należące do rodzajów Pseudomonas, Enterobacter, Citrobacter, Klebsiella i Erwinia. Jednak 5 pektolitycznych izolatów Erwinia (Pectobacterium) wyizolowanych z mikropędów czosnków uznano za patogeniczne, bowiem powodowały zgniliznę pędów badanych taksonów tej rośliny. Do najczęściej izolowanych grzybów należały gatunki z rodzajów Sarocladium, Penicillium, Talaromyces i Cladosporium, które powszechnie występują w przyrodzie jako saprotrofy.
Słowa kluczowe:
zanieczyszczenia bakteryjne i grzybowe, kultury in vitro, identyfikacja, rośliny ozdobneBibliografia
Bogatko J., Sobiszewski P., 1989. Bacterial soft rot of hyacinth and trials of its control. Proc. of the 7th Intern. Conf. of Plant Pathology. W: Z. Klement (red)., Plant pathogenic bacteria, Budapest, 801–805.
Bradbury J.F., 1988. Identyfication of cultivable bacteria from plants and plant tissue cultures by use of simple classical methods. Acta Hortic. 25, 27–37.
Brunner I., Echegaray A., Rubluo A., 1995. Isolation and characterization of bacterial contaminants from Dieffenbachia amoena Bull, Anthurium andreanum Linden and Spathiphyllum sp. Schoot cultured in vitro. Sci. Hortic. 62, 103–111.
Casselles A.C., 2012. Pathogen and biological contamination management in plant tissue culture: phytopathogens, vitro pathogens and vivo pests. Methods Mol. Biol. 877, 57–80.
Custers J.B.M., Bergervoet J.H.W., 1994. Micropropagation of gloriosa: Towards a practical protocol. Sci. Hortic. 57, 323–334.
Debergh P.C., Maene L.J., 1981. A scheme for commercial propagation of ornamental plants by tissue culture. Sci. Hortic. 14, 335–345.
Debergh P.C., Vanderschaeghe A., 1990. Mass propagation of in vitro plantlets. Chron. Hortic. 30(1), 1–2.
Ellis M.B. 1971. Dematiaceous, Hyphomycetes. Com. Myc. Inst., Kew, Surrey, England, 608 ss.
George E.F., 1993. Plant propagation by tissue culture. Part 1. The technology. Exegetics Ltd., Basingstoke, UK.
Guarro J., Gené J., Stchigel A.M., Figueras M.J., 2012. Atlas of soil Ascomycetes. CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre, Utrecht, The Netherlands, 485 ss.
Helaly M.N., El-Metwally M.A., El-Hoseiny H., Omar S.A., El-Sheery N.I., 2014. Effect of nanoparticles on biological contamination of in vitro cultures and organic regeneration of banana. Aust. J. Crop Sci. 8(4), 612–624.
Hidayat M., 2005. In vitro plant regeneration and bulblet formation of shallots (Allium ascalonicum L.) ‘Sumenep’. Acta Hortic. 688, 251–257.
Index Fungorum, www.indexfungorum.org.
Kim K.W., De Hertogh A., 1997. Tissue culture of ornamental flowering bulbs (Geophytes). Hortic. Rev. 18, 87–169.
Kowalik M., Reby E., 2002. Zakażenia powodowane przez bakterie na roślinach sadowniczych w kulturach in vitro. Zesz. Nauk. AR Krak. 388(82), 139–142.
Kuropatwa E., Machowicz-Stefaniak Z., Nurzyńska-Wierdak R., Zalewska E., 1997. The study of pathogenicity of bacterial isolates from garlic (Allium sativum L.) bulbs. Phytopathol. Pol. 13, 39–47.
Leifert C., 2000. Quality assurance systems for plant cell and tissue culture; the problem of latent persistence of bacterial pathogens and Agrobacterium-based transformation vector systems. Acta Hortic. 530, 87–92.
Leifert C., Morris C.E., Waites W.M., 1994. Ecology of microbiological saphrophytes and pathogens in tissue cultures and field-grown plants: reason for contamination problems in vitro. Crit. Rev. Plant Sci. 13(2), 139–189.
Lelliot R.A., Billing E., Hayward A.C., 1966. A determinative scheme for the fluorescent plant pathogenic pseudomonas. J. App. Bacteriol. 28, 470–489.
Marcinkowska J. 2012. Oznaczanie rodzajów grzybów sensu lato ważnych w fitopatologii. PWRiL, Warszawa, 508 ss.
Moreno-Vázquez S., Larranaga N., Uberhuága E.C., Bolacel Braga E.J., Perez-Luiz C., 2014. Bacterial contamination of in vitro plant cultures: confounding effects on somaclonal variation and detection of contamination in plant tissues. Plant Cell Tissue Organ Cult. 119(3), 533–541.
Msogoya T., Kanyagha H., Mutigitu J., Kulebelwa M., Mamiro D., 2012. Identification and management of microbial contaminants of banana in vitro cultures. J. Appl. Biosci. 55, 3987–3994.
Odutayo O.I., Amusa N.A., Okutade O.O., Ogunsanwo Y.R., 2007. Determination of the sources of microbial contaminants of cultured plant tissues. Plant Pathol. J. 6(1), 77– 81.
Odutayo O.I., Oso R.T., Akinyemi B.O., Amusa N.A., 2004. Microbial contaminants of cultured Hibiscus cannabinus and Telfaria occidentalis tissues. Afr. J. Biotechnol. 3(9), 473–476.
Orlikowska T., Zawadzka M. 2006. Bakterie w kulturach tkanek roślinnych in vitro. Biotechnologia 4(75), 64–77.
Reby E., Kowalik M., 2003. Microbiological analysis of air in the in vitro cultures laboratories. Folia Holtic. 15(2), 211–216.
Reed B.M., Mentzer J., Tanprasert P., Yu X., 1998. Internal bacterial contamination of micropropogated hazelnut: identification and antibiotic treatment. Plant Cell Tissue Organ Cult. 52, 67–70.
Sochacki D., Orlikowska T., 1997. Inicjacja kultur narcyza z różnych eksplantatów. Zesz. Nauk. AR Krak. 318(50), 199–202.
Sochacki D., Orlikowska T., 2005. The factors influencing micropropagation of Narcissus. Acta Hortic. 673, 669–673.
Sutton B.C., 1980. Coleomycetes, fungi imperfecti with picnidia, acervuli and stroma. Commonwealth Mycological Institute, Kew, Surrey, 696.
Watanabe T., 2010. Pictorial atlas of soil and seed fungi. Morphologies of cultured fungi and key to species. 3rd edition, CRC Press, Taylor & Francis Group, 404 ss.
Wojtania A., Puławska J., Gabryszewska E., 2005. Identyfication and elimination of bacterial contaminants from Pelargonium tissue cultures. J. Fruit Ornam. Plant Res. 13, 101–108.
Zenkteler E., 2009. Drobnoustroje endogenne i biotyzacja. W: Malepszy S. (red.), Biotechnologia roślin. PWN, Warszawa, rozdz. 6, 54–75.
Ziv M., Lilien-Kipnis H., 2000. Bud regeneration from inflorescence explants for rapid propagation of geophytes in vitro. Plant Cell Rep. 19, 845–850.
Katedra Ochrony Roślin, Wydział Ogrodnictwa i Architektury Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. S. Leszczyńskiego 7, 20-069 Lublin
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 Lublin
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 Lublin
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 Lublin
Katedra Roślin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Wydział Ogrodnictwa i Architektury, Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 Lublin
Licencja
Przesyłając artykuł do publikacji, autor oświadcza, że posiada pełnię autorskich praw majątkowych oraz osobistych do utworu, a jego opublikowanie nie naruszy praw osób trzecich. Autor podpisuje oświadczenie o oryginalności dzieła i wkładzie poszczególnych osób.
Przesłanie przez autora artykułu do publikacji w czasopiśmie „Annales Horticulturae” traktowane będzie jako udzielenie licencji do eksploatacji praw autorskich do artykułu na zasadach licencji Creative Commons Uznanie autorstwa - Użycie niekomercyjne - Bez utworów zależnych 4.0 (CC BY-NC-ND 4.0)