Starzenie ciętych liści Zantedeschia aethiopica i Z. elliottiana. Część I. Rozkład chlorofilu
Ewa Skutnik,
SGGWJulita Rabiza-Świder,
SGGWMariusz Wachowicz
SGGWAleksandra Łukaszewska
SGGWAbstrakt
Degradacja chlorofilu zachodząca w trakcie starzenia się ciętych liści regulowana jest przez fitohormony. W doświadczeniach analizowano zmiany zawartości chlorofilu w trakcie starzenia się ciętych liści dwóch gatunków stosowanych jako zieleń cięta (Zantedeschia aethiopica Spr. i Zantedeschia elliottiana Engl.) i wpływ BA (benzyloadeniny) i GA 3 (kwasu giberelinowego) na ten proces. Roztwory obu regulatorów wzrostu aplikowano w formie 24-godzinnego kondycjonowania (BA - 0,1 mmol.dm -3; GA 3 - 0,25 mmol.dm -3). Kwas giberelinowy okazał się skuteczniejszy od benzyloadeniny w opóźnianiu rozkładu chlorofilu w przypadku obu gatunków, zwiększając tym samym ich trwałość. Pożywka standardowa, używana w celu przedłużenia pozbiorczej trwałości ciętych kwiatów, (8-HQC /cytrynian 8-hydroksychinoliny/ + 2% S /sacharoza/) istotnie przyspieszyła degradację chlorofilu w ciętych liściach Z. aethiopica, nie mając jednocześnie wpływu w przypadku Z. elliottiana. W obu jednak przypadkach pożywka osłabiła pozytywny wpływ GA 3 na końcową zawartość chlorofilu.
Słowa kluczowe:
degradacja chlorofilu, zieleń cięta, kwas giberelinowy, benzyloadenina, Zantedeschia aethiopica, Zantedeschia elliottianaBibliografia
Downs C. G., Somerfield S. D., Davey M. C., 1997. Cytokinin treatment delays senescence but not sucrose loss in harvested broccoli. Postharvest Biol. Technol. 11, 93–100.
Fang Z., Bouwkamp J. C., Solomos T., 1998. Chlorophyllase activities and chlorophyll degradation during leaf senescence in non-yellowing mutant and wild type of Phaseolus vulgaris L. J. Exp. Bot. 49, 503–510.
Gan S., Amasino R., 1997. Making sense of senescence. Plant Physiol. 102, 311–319.
Guak S., Fuchigami L. H., 2002. Foliar application of urea or ABA affect growth cessation, leaf senescence and abscission, cold acclimation and levels of reserve nitrogen and carbohydrates in nitrogen-treated apple nursery plants. J. Hort. Sci. Biotechn. 77, 137–142.
Halevy A. H., Mayak S., 1981. Senescence and postharvest physiology of cut flowers. Hort. Rev. 3, 59–143.
Hodges D. M., Forney C. F., 2000. The effect of ethylene, depressed oxygen and elevated carbon dioxide on antioxidant profiles of senescing spinach leaves. J. Exp. Bot. 51, 645–655.
Kappers I. F., Jordi W., Tsesmetzis N., Maas F. M., Van der Plas L. H. W., 1998. GA4 does not require conversion into GA1 to delay senescence of Alstroemeria hybrida leaves. J. Plant Growth Regul. 17, 89–93.
Lu C., Lu Q., Zhang J., Kuang T., 2001. Characterization of photosynthetic pigment composition, photosystem II photochemistry and thermal energy dissipation during leaf senescence of wheat grown in the field. J. Exp. Bot. 52, 1805–1810.
Masclaux C., Valadier M. H., Brugiere N., Morot-Gaudry J. F., Hirel B., 2000. Characterization of the sink/source transition in tobacco (Nicotiana tabacum L.) shoots in relation to nitrogen management and leaf senescence. Planta 211, 510–518.
Matile P., Hörtensteiner S., Thomas P., Kräutler B., 1996. Chlorophyll breakdown in senescent leaves. Plant Physiol. 112, 1403–1409.
Moran R., Porath D., 1980. Chlorophyll determination in intact tissues using N,N-Dimethylformamide. Plant Physiol. 65, 478–479.
Pic E., Teyssendier de la Serve B., Tardieu F., Turc O., 2002. Leaf senescence induced by mild water stress deficit follows the same sequence of macroscopic, biochemical, and molecular events as monocarpic senescence in pea. Plant Physiol. 128, 236–246.
Rabiza-wider J., Rybka Z., Skutnik E., Łukaszewska A., 2003. Proteolysis and expression of the cysteine protease gene in senescing cut leaves of Hosta ‘Undulata Erromena’ and Zantedeschia aethiopica Spr. treated with BA or GA3. Acta Physiol. Plant. 25, 319–324.
Rossato L., MacDuff J. H., Laine P., Le Deunff E., Ourry A., 2002. Nitrogen storage and remobilization in Brassica napus L. during the growth cycle: Effects of methyl jasmonate on nitrate uptake, senescence, growth, and VSP accumulation. J. Exp. Bot. 53, 1131–1141.
Scheumann V., Schoch S., Rüdiger W., 1999. Chlorophyll b reduction during senescence of barley seedlings. Planta 209, 364–370.
Skutnik E., Łukaszewska A., Tyborowska K., 1999. Retarding senescence of cut leaves of Hosta plantaginea by growth regulators. Annals of Warsaw Agricultural University – SGGW Horticulture, Landscape Architecture 20, 3–8.
Skutnik E., Łukaszewska A., 2001. Regulacja pozbiorczej trwałości gatunków uprawianych na zieleń ciętą. Post. Nauk Roln. 5, 111–124.
Skutnik E., Łukaszewska A., Serek M., Rabiza J., 2001. Effect of growth regulators on postharvest characteristics of Zantedeschia aethiopica. Postharvest Biol. Technol. 21, 241–246.
Smart C., 1994. Gene expression during leaf senescence. New Phytologist 126, 419–448.
Thomas H., Stoddart J. L., 1980. Leaf senescence. Ann. Rev. Plant Physiol. 31, 83–111.
Thomas H., Ougham H., Canter P., Donnison I., 2002. What stay-green mutants tell us about nitrogen remobilization in leaf senescence. J. Exp. Bot. 53, 801–808.
Wingler A., von Schaewen A., Leegood R. C., Lea P. J., Quick W. P., 1998. Regulation of leaf senescence by cytokinin, sugars, and light. Plant Physiol. 116, 329–335.
SGGW
SGGW
SGGW
SGGW
Licencja
Artykuły są udostępniane na zasadach CC BY 4.0 (do 2021 r. na zasadach CC BY-NC-ND 4.0 międzynarodowe).
Przysłanie artykułu do redakcji oznacza, że nie był on opublikowany wcześniej i nie jest rozpatrywany do publikacji gdzie indziej.
Autor podpisuje oświadczenie o oryginalności dzieła, wkładzie poszczególnych osób i źródle finansowania.
