Agronomy Science, przyrodniczy lublin, czasopisma up, czasopisma uniwersytet przyrodniczy lublin
Przejdź do głównego menu Przejdź do sekcji głównej Przejdź do stopki
Agronomy Science Baner text

Tom 75 Nr 4 (2020)

Artykuły

Wpływ preparatów biologicznych na plonowanie, zachwaszczenie i jakość ziarna pszenicy orkisz

DOI: https://doi.org/10.24326/as.2020.4.5
Przesłane: 17 września 2020
Opublikowane: 12.11.2020

Abstrakt

Doświadczenie polowe przeprowadzone w Gospodarstwie Doświadczalnym w Czesławicach miało na celu ocenę wpływu preparatów biologicznych w różnych kombinacjach na plon, zachwaszczenie i jakość ziarna jarej pszenicy orkisz odmiany ‘Wirtas’. Uwzględniono pojedyncze oraz podwójne zabiegi opryskiwania preparatami Herbagreen Basic, Bio-algeen S90 i Asahi SL, a także obiekt kontrolny oraz obiekt z pełną ochroną chemiczną. Eksperyment wykazał brak istotnego wpływu biostymulatorów na plonowanie, parametry zachwaszczenia oraz zawartość potasu i wapnia w ziarnie pszenicy orkisz, natomiast zawartość magnezu i sodu była istotnie wyższa w obiektach traktowanych biostymulatorami w porównaniu z obiektami, na których nie stosowano biologicznych preparatów. Zastosowanie chemicznej ochrony łanu spowodowało istotne ograniczenie liczby i suchej masy chwastów w stosunku do obiektu kontrolnego, ale nie miało wpływu na plon ziarna. Herbagreen Basic, Bio-algeen S90 i Asahi SL mogą być polecane do stosowania w uprawie pszenicy orkisz, ponieważ produktywność roślin orkiszu na obiektach, na których stosowano biopreparaty, i na obiektach z pełną ochroną łanu była zbliżona.

Bibliografia

  1. Calvo P., Nelson L., Kloepper J.W., 2014. Agricultural uses of plant biostimulants. Plant Soil. 383(1–2), 3–41. https://doi.org/10.1007/s11104-014-2131-8
  2. Celiktopuz E., Kapur B., Sarıdas M.A., Kargı S.P., 2020. Response of strawberry fruit and leaf nutrient concentrations to the application of irrigation levels and a biostimulant. J. Plant Nutr. 1–13. https://doi.org/10.1080/01904167.2020.1806310
  3. Chen Q., Li Z., Qu Z., Zhou H., Qi Y., Liu Z., Zhang M., 2020. Maize yield and root morphological characteristics affected by controlled-release diammonium phosphate and Paecilomyces variotii extracts. Field Crops Res. 255, 107862. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2020.107862
  4. Filipek-Mazur B., Pużyńska K., Tabak M., Pużyński S., 2020. Enzymatic activity of soil under spelt grown in an organic farming system in Poland’s temperate climate. Agronomy 10(7), 930. https://doi.org/10.3390/agronomy10070930
  5. Haliniarz M., Gawęda D., Nowakowicz-Dębek B., Najda A., Chojnacka S., Łukasz J., Wlazło Ł., Różańska-Boczula M., 2020. Evaluation of the weed infestation, grain health, and productivity parameters of two spelt wheat cultivars depending on crop protection intensification and seeding densities. Agriculture 10, 229. https://doi.org/10.3390/agriculture10060229
  6. Janas R., 2009. Możliwości wykorzystania efektywnych mikroorganizmów w ekologicznych systemach produkcji roślin uprawnych. Probl. Inż. Rol. 3, 111–119.
  7. Jardin P. du, 2012. The science of plant biostimulants – a bibliographic analysis. Contract 30-CE0455515/00-96, ad hoc. Study on biostimulants products. http://hdl.handle.net/2268/169257 [dostęp: 09.09.2020].
  8. Jia C.H., Yu X.J., Zhang M., Liu Z.G., Zou P., Ma J., Xu Y.C., 2019. Application of melatonin enhanced tolerance to high temperature stress in cherry radish (Raphanus sativus L. var. radculus pers). J. Plant Growth Regul. 39, 631–640. https://doi.org/10.1007/s00344-019-10006-1
  9. Kwiatkowski C.A., Haliniarz M., Kołodziej B., Harasim E., Tomczyńska-Mleko M., 2015. Content of some chemical components in carrot (Daucus carota L.) roots depending on growth stimulators and stubble crops. J. Elementol. 20(4), 933–943. https://doi.org/10.5601/jelem.2014.19.4.812
  10. Kwiatkowski C.A., Kołodziej B., Woźniak A., 2013. Yield and quality parameters of carrot (Daucus carrota L.) roots depending on growth stimulators and stubble crops. Acta Sci. Pol., Hort. Cult. 12(5), 55–68.
  11. Kwiatkowski C.A., Yakimovich A., Kołodziej B., Harasim E., 2017. Efektywność biopreparatów w konwencjonalnym i ekologicznym systemie uprawy rumianku pospolitego (Chamomilla recutita L. Rausch). Ann. UMCS, sec. E., Agricultura 72(1), 89–102. https://doi.org/10.24326/as.2017.1.7
  12. Lamparski R., Kotwica K., Jaskulski D., Piekarczyk M., Wawrzyniak M., 2013. Wpływ stosowania biopreparatów w uprawie pszenicy ozimej na liczebność fitofagicznej entomofauny. Fragm. Agron. 30(3), 108–114.
  13. Łozowicka B., Konecki R., Iwaniuk P., Drągowski W., Rusiłowska J., Pietraszko A., Snarska K., 2019. Wpływ biostymulatora i ochrony herbicydowej na zachwaszczenie oraz parametry ilościowe i jakościowe plonu pszenicy jarej. Prog. Plant Prot. 59(4), 258–264. https://doi.org/10.14199/ppp-2019-034
  14. Maciejewski T., Szukała J., Jarosz A., 2007. Wpływ biostymulatora Asahi SL i Atonik SL na cechy jakościowe bulw ziemniaków. J. Res. Appl. Agric. Eng. 52(3), 109–112.
  15. Magistrali A., Vavera R., Janovska D., Rempelos L., Cakmak I., Leifert C., Grausgrubere H., Butlera G., Wilkinson A., Bilsborrow P., 2020. Evaluating the effect of agronomic management practices on the performance of differing spelt (Triticum spelta) cultivars in contrasting environments. Field Crops Res. 255, 107869. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2020.107869
  16. Michalski T., Duhr E., 2009. Wpływ zaprawiania biostymulatorem Biochikol 020 PC na rozwój i plonowanie dwóch odmian pszenicy jarej. J. Res. Appl. Agric. Eng. 54(4), 20–25.
  17. Michalski T., Horoszkiewicz-Janka J., 2005. Wpływ bioregulatora Asahi SL na zdrowotność i plonowanie jęczmienia jarego i pszenicy jarej. Prog. Plant Prot. 45(2), 910–913.
  18. Moraes E.R. de, Camargo R. de, Lana R.M.Q., Madeiros M.H., Menezes F.G., Giorgenon E.P., 2020. Yield and biometry of fertilized sugar cane with organomineral fertilizer of sewage sludge and biostimulant. Biosci. J. 36(5), 1564–1576. https://doi.org/10.14393/BJ-v36n5a2020-42189
  19. Navarro-León E., López-Moreno F.J., Rios J.J., Blasco B., Ruiz J.M., 2020. Assaying the use of sodium thiosulphate as a biostimulant and its effect on cadmium accumulation and tolerance in Brassica oleracea plants. Ecotoxicol. Environ. Saf. 200, 110760. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.110760
  20. Piskier T., 2006. Reakcja pszenicy jarej na stosowanie biostymulatorów i absorbentów glebowych. J. Res. Appl. Agric. Eng. 51(2), 136–138.
  21. Ricci M., Tilbury L., Daridon B., Sukalac K., 2019. General principles to justify plant biostimulant claims. Front. Plant Sci. 10, 494. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00494
  22. Stępień A., Wojtkowiak K., Skłodowski M., Pietrusewicz M., 2017. Wpływ dolistnego nawożenia Cu, Zn i Mn na wskaźniki jakościowe ziarna i elementy plonowania pszenicy ozimej orkisz (Triticum aestivum ssp. spelta L.). Fragm. Agron. 34(3), 97–108.
  23. Szczepanek M., Wilczewski E., Siwik-Ziomek A., 2017. Effect of a biostimulant on the accumulation of Mg in winter oilseed rape under different mineral fertilization doses. J. Elementol. 22(4), 1375–1385. https://doi.org/10.5601/jelem.2017.22.1.1317
  24. Woropaj-Janczak M., Andrzejewska J., Skinder Z., 2011. Reaction of German chamomile (Chamomilla recutita L. Rauschert) cultivars to biostimulants and foliar fertilisation. Herba Pol. 57(1), 16–26.
  25. Zarzecka K., Mystkowska I., Gugała M., Dołęga H., 2019. Content and uptake of selected macroelements with the yield of potato tubers depending on herbicides and biostimulants. J. Elementol. 24(1), 165–179. https://doi.org/10.5601/jelem.2017.22.3.1519

Downloads

Inne teksty tego samego autora

1 2 > >> 

Podobne artykuły

<< < 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 > >> 

Możesz również Rozpocznij zaawansowane wyszukiwanie podobieństw dla tego artykułu.