Wpływ warunków siedliskowych oraz długotrwałego odłogowania na zmienność genetyczną przytulii czepnej (Galium aparine L.)
SYLWIA OKOŃ
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 LublinELŻBIETA PODSTAWKA-CHMIELEWSKA
Katedra Ekologii Rolniczej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 LublinALEKSANDRA NUCIA
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 LublinJOANNA KURUS
Katedra Ekologii Rolniczej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 LublinTOMASZ OCIEPA
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 LublinEDYTA PACZOS-GRZĘDA
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 LublinKRZYSZTOF KOWALCZYK
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 LublinAbstrakt
Odłogowanie i modyfikacje w użytkowaniu gruntów rolnych przyczyniają się do zmian bioróżnorodności. Skutkiem tego zjawiska jest powolny proces sukcesji wtórnej roślinności, prowadzący do zwiększenia ich zmienności genetycznej. Celem pracy było określenie poziomu zróżnicowania genetycznego przytulii czepnej występującej na dwóch różnych siedliskach gruntów odłogowanych. Oceny zróżnicowania genetycznego dokonano, wykorzystując system markerowy ISSR. Na podstawie wyników badań polimorfizmu markerów ISSR utworzono macierz dystansu genetycznego Dice’a. Wartość indeksów podobieństwa wahała się od 0,755 do 1,00. Wykazano niewielką zmienność genetyczną analizowanych genotypów przytulii czepnej. Wspólna klasteryzacja genotypów z poszczególnych siedlisk naturalnych może świadczyć o tym, że typ siedliska, gleba oraz długotrwałe odłogowanie mogą powodować różnicowanie przytulii czepnej.
Słowa kluczowe:
Galium aparine L., ISSR, zmienność genetyczna, odłogowanieBibliografia
Bishoyi A.K., Sharma A., Kavane A., Geetha K.A., 2016. Varietal discrimination and genetic variability analysis of Cymbopogon using RAPD and ISSR markers analysis. Appl. Biochem. Biotechnol. 179 (4), 659–70.
Domaradzki K., 2006. Minimum efective doses for Galium aparine control in the spring cereals. Prog. Plant Prot. 46 (2), 267–272.
Doyle J.J., Doyle J.L., 1987. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaftissue. Phytochem. Bull. 19, 11–15.
Ernst V., 2003. Zur Diversität von Galium aparine L.-Herkünften. Doctoral Diss. Hohenheim University, Stuttgart.
Hammami R., Jouve N., Soler C., Frieiro E., González J.M., 2014. Genetic diversity of SSR and ISSR markers in wild populations of Brachypodium distachyon and its close relatives B. stacei and B. hybridum (Poaceae). Plant System. Evol. 300 (9), 2029–2040.
Hammer Ø., Harper D.A.T., Ryan P.D., 2001. Past: Paleontological Statistics Software Package for Education and Data Analysis. Palaeontol. Electronica 4 (1), 1–9.
Hübner R., Fykse H., Hurle K., Klemsdal S.S., 2003. Morphological differences, molecular characterization, and herbicide sensitivity of catchweed bedstraw (Galium aparine) populations. Weed Sci. 51 (2), 214–225.
Jabłoński W., Widera M., 1996. Ekologiczno-ekonomiczne aspekty kształtowania fotocenoz na obszarach odłogowanych. Acta Agrobot. 49, 3–11.
Khalik K.A., El-Twab M.A., Galal R., 2014. Genetic diversity and relationships among Egyptian Galium (Rubiaceae) and related species using ISSR and RAPD markers. Biologia, Sec. Botany 69 (3), 300–310.
Ko W.R., Sa K.J., Roy N.S., Choi H.-J., Lee J.K., 2016. Analysis of the genetic diversity of super
sweet corn inbred lines using SSR and SSAP markers. Genet. Mol. Res.15 (1), 1–13.
Kraska P., Okoń S., Pałys E., 2009. Weed infestation of a winter wheat canopy under the conditions of application of different herbicide doses and foliar fertilization. Acta Agrobot. 62,193–206.
Mabberley D.J., 1987. The plant-book. Cambridge University Press, Cambridge.
Malicki L., Kurus J., Pałys E., Podstawka-Chmielewska E., 2002. Fitocenoza odłogu na glebie lekkiej i ciężkiej jako element krajobrazu rolniczego. Fragm. Agron. 19, 1 (73), 32–40.
Marks M., Nowicki J., Szwejkowski Z., 2000. Odłogi i ugory w Polsce. Cz. I. Przyczyny odłogowania i zjawiska towarzyszące. Fragm. Agron. 1, 5–19.
Mosaferi S., Sheidai M., Keshavarzi M., Noormohammadi Z., 2015, Genetic diversity and morphological variability in Polygonum aviculare s.l. (Polygonaceae) of Iran. Phytotaxa 233 (2), 166–178.
Nei M., Li W.H., 1979. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases. Proc. Natl. Acad. Sci., 76, 5269–5273.
Okoń S., Surmacz-Magdziak A., Paczos-Grzęda E., 2013. Genetic diversity among cultivated and wild Chamomile germplast based on ISSR analysis. Acta Sci. Pol., Hortorum Cultus 12 (2), 43–50.
Podstawka-Chmielewska E., Kurus J., 2007. Wpływ wieloletniego odłogowania pola ornego na właściwości chemiczne gleby. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 520, 845–850.
Podstawka-Chmielewska E., Pałys E., Kurus J., 2007. Sukcesja roślinności w czasie 10-letniego odłogowania gruntów poornych na glebie lekkiej. Acta Bot. Warm. Mas. 4, 23–34.
Pranagal J., Podstawka-Chmielewska E., 2012. Physical properties of a Rendzic Phaeozem during a ten-year period of fallowing under the conditions of south-eastern Poland. Geoderma 189–190, 262–267.
Rola J., 1991. Ekologiczno-ekonomiczne podstawy chemicznej walki z chwastami na polach uprawnych. Mat. 31 Sesji Nauk. IOR 1, 110–124.
Santos E., Matos M., Silva P., Figueiras A.M., Benito C., Pinto-Carnide O., 2016. Molecular diversity and genetic relationships in Secale. J. Genet. 95, 273–2812.
Vidyakin A.I., Boronnikova S.V., Nechayeva Yu.S., Pryshnivskaya Ya.V., Boboshina I.V., 2015. Genetic variation, population structure, and differentiation in scots pine (Pinus sylvestris L.) from the Northeast of the Russian plain as inferred from the molecular genetic analysis data. Russ. J. Genet. 51, 1213–1220.
van der Weide R.Y., 1993. Population dynamics and population control of Galium aparine L. 15–18.
Willis J.C., 1985. A dictionary of the flowering plants and ferns. Cambridge University Press, Cambridge, 1294 pp.
Zietkiewicz E., Rafalski A., Labuda D., 1994. Genome fingerprinting by simple-sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification. Genomics 20, 176–183.
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin
Katedra Ekologii Rolniczej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin
Katedra Ekologii Rolniczej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin
Instytut Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin
Licencja
Artykuły są udostępniane na zasadach CC BY 4.0 (do 2020 r. na zasadach CC BY-NC-ND 4.0)..
Przysłanie artykułu do redakcji oznacza, że nie był on opublikowany wcześniej i nie jest rozpatrywany do publikacji gdzie indziej.
Autor podpisuje oświadczenie o oryginalności dzieła, wkładzie poszczególnych osób i źródle finansowania.
Samoarchiwizacja
Czasopismo Agronomy Science przyjęło politykę samoarchiwizacji nazwaną przez bazę Sherpa Romeo drogą niebieską. Od 2021 r. autorzy mogą samoarchiwizować postprinty artykułów oraz wersje wydawnicze (zgodnie z licencją CC BY). Artykuły z lat wcześniejszych (udostępniane na licencji CC BY-NC-ND 4.0) mogą być samoarchiwizowane tylko w wersji wydawniczej.
